SynRAM 3D炎症模型可用于各种细胞迁移分析

趋化性和迁移

将细胞在血管通道中孵育，并将化学引诱物注射到组织室或第二血管通道中（如果使用理想化的网络）。实时观察免疫细胞穿过工程化多孔区域进入组织室。该测定可以在静态或流动条件下进行。

血管（内皮细胞）介导的滚动，粘附和迁移分析

在血管通道中培养的内皮细胞用生物或化学试剂活化以产生炎症反应，然后实时跟踪免疫细胞穿过内皮进入组织室的滚动，粘附和迁移。

血管和组织共培养介导滚动，粘附和迁移测定

内皮细胞在血管通道中培养，而组织室容纳平滑肌细胞，上皮细胞，成纤维细胞或器官特异性细胞（例如星形胶质细胞，肝细胞）。响应于细胞信号传导和炎症激活，可以实时观察和量化穿过内皮的滚动，粘附和迁移。

SynVivo的SynRAM?3D炎症模型已被开发用于在真实和动态的环境中研究整个炎症途径。通过用内皮细胞腔重建共培养组织和/或肿瘤细胞的组织学切片，SynVivo平台提供生理学上真实的模型，包括平台中的流动和剪切，并实现滚动，粘附和迁移过程的实时跟踪。该模型已成功验证体内研究，显示出与滚动速度，粘附模式和迁移过程的良好相关性（Lamberti等，2014，Soroush等2016）。

SynRAM 3D炎症模型提供了***个真实的测试环境，包括：

微血管环境中的生理剪切应力

体内像血管形态，具有完全封闭的腔

细胞间相互作用的共培养能力

来自单个实验的定量实时滚动，粘附和迁移数据

SynRAM能够在***个实验中实时评估包括滚动，粘附和通过多个细胞层迁移的细胞相互作用，并且表示与体内结果密切相关的数据。

SynRAM的创新设计克服了流动室或基于Transwell室的分析中固有的当前限制。目前的流动室设计过于简单，缺乏微环境的规模和几何形状，无法模拟轮回。类似地，Transwell室不考虑体内观察到的流体剪切和尺寸/拓扑，迁移的终点测量不可重复并且不提供实时可视化。

SynVivo的专有芯片设计包括从复杂的体内衍生微血管网络（从数字化图像获得）到产生逼真的细胞组成和血管形态，从而产生不同的剪切和流动条件，简化理想化网络，旨在重现细胞组成和恒定的剪切和流动条件。